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PEAKS QC功能和蛋白變化趨勢設(shè)計結(jié)合實現(xiàn)最準確的TMT定量詳解

瀏覽次數(shù):1518 發(fā)布日期:2024-3-12  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責任自負
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蛋白質(zhì)組學定量的假陽性變化限制了其在揭示生物機制方面的有效性,因此影響了蛋白質(zhì)組學技術(shù)在制藥行業(yè)的應用,而不僅僅是學術(shù)研究領(lǐng)域。本研究即從解決LC-MS/MS數(shù)據(jù)采集過程中引起的變化出發(fā),尋求消除定量假陽性的最佳方案。首先確定了影響重現(xiàn)性的兩個主要因素,包括肽段的豐度和unique peptide的數(shù)量。豐度低且只有一條unique peptide時,很容易產(chǎn)生較高的變異系數(shù)(CV),導致定量不準確。然而樣品中多肽的豐度是不可調(diào)節(jié)的,簡單地將unique peptide為1的蛋白剔除也不是很合理。因此,本研究使用PEAKS TMT Quality Control功能來計算技術(shù)重復間的CV,并將其用于定量前的PSM質(zhì)量評估。QC-plex顯著降低了定量的假陽性,但仍然存在隨機的假陽性結(jié)果。因此,本研究又提出了Trend-design方案,以跟蹤多個節(jié)點的蛋白變化趨勢,并得到了不同效價和劑量的分子實驗的證實。QC-plexTrend-design結(jié)合使用,可以達到最準確的TMT定量效果,實現(xiàn)蛋白質(zhì)組學解鎖生物機制的深度應用。

本論文的數(shù)據(jù)分析工作由Bioinformatics Solutions Inc.PEAKS Studio團隊協(xié)助完成,成果已發(fā)表于J. Am. Soc. Mass Spectrom[1]

 
QC-plex實驗設(shè)計
4份野生型小鼠腦組織蛋白酶切肽段,按照0.81:1:1:0.81比例分別標記TMT10plex127N、128N、129N130N,所產(chǎn)生的質(zhì)譜數(shù)據(jù)使用PEAKS Studio完成分析,PSMProtein groupFDR均設(shè)置為1%,共得到75997 PSMs46313 peptides,6776 protein groups,7477 proteins。同時,用PEAKS獨有的Quality Control功能可以計算每一個PSMCV值,結(jié)果如圖1和表1,表明在蛋白質(zhì)組學數(shù)據(jù)中,樣本量越低,越容易產(chǎn)生更高的CVs

圖1 兩組QC-plexCV值分布

表1 不同QC設(shè)置的定量蛋白統(tǒng)計

 
QC-plex定量準確性測試
在PEAKS軟件的TMT方法設(shè)置界面,可以添加Quality Control Replicate Channels,默認CV范圍為≤30%(圖2)。圖3A-D中,紫色區(qū)域表示定量的假陽性結(jié)果,對比四種QC的設(shè)置方式可以看出,QC-plex越多,假陽性的定量就越少。
 

圖2 PEAKS設(shè)置TMT Quality Control

圖3 QC-plex對定量假陽性的過濾


 定量準確性與CV、unique peptides數(shù)量的關(guān)系 
在表2中,進一步從unique peptide數(shù)量和CV方面比較了蛋白的定量準確性。當不使用QC-plex時,定量假陽性(Q<0.57 or >1.05)的蛋白有89個,分別設(shè)置QC-0.81、QC-1和QC-0.81&1后,定量假陽性的蛋白分別減少為77、24和15,并且也能看出unique peptide數(shù)量越少,越容易產(chǎn)生更高的CV,在應用了QC-plex后,即使unique peptide為1的蛋白,CV值也都在30%以下。

表2 不同QC設(shè)置的蛋白數(shù)統(tǒng)計

蛋白趨勢變化實驗設(shè)計
雖然上述實驗驗證了PEAKS QC功能對豐度較低且unique peptide數(shù)量少的蛋白定量的校正效果,但實際上,我們很難改變復雜生物學樣本中提取出來的蛋白豐度,因此本研究又設(shè)計了圖4所示的趨勢變化實驗(Trend design)的方案,從另一個角度實現(xiàn)TMT定量準確性的判斷。該方案共包含5組小鼠:野生型小鼠組(WT)、無處理基因敲除小鼠組(non-Treated)、低劑量低親和力分子處理基因敲除小鼠組(LowAffinity_LowDose)、低劑量高親和力分子處理基因敲除小鼠組(HighAffinity_LowDose)、高劑量高親和力分子處理基因敲除小鼠組(HighAffinity_HighDose),每組肽段使用不同channel的TMT試劑標記,然后等量混合進行質(zhì)譜檢測。

圖4 不同分子親和力富集及劑量差異設(shè)計

基于PEAKS的定量結(jié)果,篩選non-Treated/WT倍數(shù)變化大于2的蛋白進行所有組別的比較。如圖5所示,隨著藥物分子親和力和劑量的增加,基因敲除小鼠的差異表達蛋白逐漸接近野生型小鼠,這符合實驗預期,證明了定量的準確性。

圖5 不同處理組之間蛋白表達量的倍數(shù)變化
 
 
總結(jié)
影響蛋白定量準確性的兩個主要因素,一個是豐度低,一個是unique peptide數(shù)量過少,但我們并不能改變未知樣品中存在的這兩個客觀問題,因此建議在實驗過程中盡可能多做一些重復,通過QC-plex來計算CV,從而檢驗重現(xiàn)性。此外,結(jié)合Trend-design,可以達到最準確的TMT定量效果(圖6)。
圖6 實現(xiàn)最準確的蛋白質(zhì)組學TMT定量的最佳方案
 
參考文獻
1. Xianyin Lai, Guihong Qi, Chris Kovach, Yaming Wang, Isaiah Clark, Keyue Chen, Zhixiang Yang, Nick Babb, Forest Andrews, Ross Fellows, Baozhen Shan, Weiwu Chen, Tom Yang, and Wenting Li. Journal of the American Society for Mass Spectrometry . DOI: 10.1021/jasms.3c00346.
 

 

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標簽: QC功能 TMT定量
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